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化学性质

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分子结构如右图

Coomassie brilliant blue G-250

。

考马斯亮蓝有G-250和R-250两种。

考马斯亮蓝G-250在游离 状态下呈红色，*光吸收在465nm；当它与蛋白质结合后变为青色，蛋白质-色素结合物在595nm波长下有*光吸收。其光吸收值与蛋白质含量成正比。

染色

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蛋白质与考马斯亮蓝G-250结合在2min左右的时间内达到平衡，完成反应十分迅速；其结合物在室温下1h内保持稳定。该法是1976年Bradford建立，试剂配制简单，操作简便快捷，反应非常灵敏，灵敏度比Lowry法还高4倍，可测定微克级蛋白质含量，测定蛋白质浓度范围为0～1 000μg/mL，是一种常用的微量蛋白质快速测定方法。

考马斯亮蓝有G-250和R-250两种。其中考马斯亮蓝G-250由于与蛋白质的结合反应十分迅速，常用来作为蛋白质含量的测定。考马斯亮蓝R-250与蛋白质反应虽然比较缓慢，但是可以被洗脱下去，所以可以用来对电泳 条带染色。

测定含量

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简介

该方法用于大多数蛋白质的定量是比较精确的，但不适用于小分子碱性多肽的定量。如核糖核酸酶 或溶菌酶。去污剂的浓度超过0．2%影响测定结果，如TritonX-100 、SDS、NP-40等。常用于细胞骨架 的检验。

浓染液

将100mg考马斯亮蓝G-250溶于50mL 95%乙醇，加入100mL 85%的磷酸，然后，用蒸馏水 补充至1000mL，此染液放4℃至少6个月保持稳定。

样本准备

尽量使用与待测样本性质相近的蛋白质作为标准品，例如测定抗体，可用纯化的抗体作为标准。如果待测样本是未知的，也可用抗体作为标准蛋白。通常在20μg—150μg/100μL之间绘制标准曲线。

溶解

将待测样本溶于100~1缓冲溶液中，该缓冲溶液应与制作标准曲线的缓冲溶液相同(*用PBS)。

稀释

按1：5用蒸馏水稀释浓染料结合溶液，如出现沉淀，过滤除去。

作用

每个样本加5mL

稀释的染料结合溶液，作用5～30min。染液与蛋白质结合后，将由红色变为蓝色，在595nm波长下测定其吸光度 。注意，显色反应不得超过30min．

计算

根据标准曲线计算待测样本的浓度。